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    細(xì)胞凍存的具體步驟是什么?

    發(fā)布時(shí)間: 2025-12-30  點(diǎn)擊次數(shù): 117次
    細(xì)胞凍存是細(xì)胞生物學(xué)領(lǐng)域長期保存細(xì)胞活性的核心技術(shù),通過梯度降溫結(jié)合凍存液保護(hù),使細(xì)胞代謝停滯,實(shí)現(xiàn)長期穩(wěn)定保存。其核心原則是“慢凍快融”,凍存步驟需嚴(yán)格遵循標(biāo)準(zhǔn)化流程,避免細(xì)胞損傷,以下是詳細(xì)的實(shí)操步驟及關(guān)鍵要點(diǎn):
     
    一、凍存前準(zhǔn)備(核心物料與環(huán)境)
     
    細(xì)胞準(zhǔn)備:選擇對(duì)數(shù)生長期、活性≥90%的細(xì)胞,確保細(xì)胞狀態(tài)良好(避免老化、污染細(xì)胞);提前24h更換新鮮培養(yǎng)基,保證細(xì)胞活力。
     
    凍存液配制:
     
    常規(guī)細(xì)胞凍存液:胎牛血清(FBS):培養(yǎng)基:二甲基亞砜(DMSO)=7:2:1,DMSO是核心保護(hù)劑,可穿透細(xì)胞膜,降低冰點(diǎn),避免細(xì)胞內(nèi)形成冰晶損傷細(xì)胞。
     
    無血清凍存液:商用無血清細(xì)胞凍存液(含保護(hù)劑),無需自行配制,適配干細(xì)胞、敏感細(xì)胞,避免血清批次差異影響。
     
    注意:凍存液需現(xiàn)配現(xiàn)用,DMSO常溫下對(duì)細(xì)胞有毒,需在冰浴中配制,全程低溫操作。
     
    器材準(zhǔn)備:無菌離心管、凍存管(標(biāo)注細(xì)胞名稱、凍存日期、代次)、移液槍、無菌吸管、離心機(jī)、冰浴盆、程序降溫盒(含異丙醇)、-80℃冰箱、液氮罐。
     
    環(huán)境準(zhǔn)備:超凈工作臺(tái)紫外消毒30min,無菌操作,避免污染。
     
    二、核心凍存步驟(標(biāo)準(zhǔn)化操作)
     
    步驟1:細(xì)胞消化與收集
     
    吸棄培養(yǎng)瓶/皿中的舊培養(yǎng)基,用無菌PBS緩沖液輕輕漂洗細(xì)胞2次,去除殘留血清和胰酶抑制物。
     
    加入適量0.25%胰蛋白酶-EDTA消化液(覆蓋細(xì)胞表面即可),37℃培養(yǎng)箱孵育1-3min,顯微鏡下觀察細(xì)胞變圓、間隙增大,立即加入2倍體積的含血清培養(yǎng)基終止消化。
     
    用無菌吸管輕輕吹打瓶壁,使細(xì)胞完全脫落,形成單細(xì)胞懸液,轉(zhuǎn)移至無菌離心管中。
     
    步驟2:細(xì)胞離心與計(jì)數(shù)
     
    離心管平衡后,放入離心機(jī),800-1000rpm離心5min(低速離心避免細(xì)胞損傷)。
     
    離心結(jié)束后,緩慢吸棄上清液,避免擾動(dòng)細(xì)胞沉淀;用少量新鮮培養(yǎng)基重懸細(xì)胞,取少量細(xì)胞懸液進(jìn)行臺(tái)盼藍(lán)染色計(jì)數(shù),確保細(xì)胞活性≥90%。
     
    步驟3:細(xì)胞重懸與分裝
     
    向細(xì)胞沉淀中加入預(yù)冷的凍存液,輕輕吹打均勻,調(diào)整細(xì)胞濃度為1×10?-1×10?個(gè)/mL(濃度過高易導(dǎo)致細(xì)胞損傷,過低復(fù)蘇效率低)。
     
    將細(xì)胞懸液分裝至無菌凍存管中,每管1-1.5mL,避免管內(nèi)產(chǎn)生氣泡;擰緊凍存管蓋,再次核對(duì)標(biāo)注信息。
     
    步驟4:梯度降溫(關(guān)鍵步驟,避免冰晶損傷)
     
    梯度降溫是細(xì)胞凍存的核心,目的是讓細(xì)胞緩慢脫水,減少冰晶形成,目前主流兩種方法:
     
    程序降溫盒法(常用):
     
    將凍存管放入含異丙醇的程序降溫盒中,程序降溫盒可實(shí)現(xiàn)-1℃/min的勻速降溫。
     
    放入-80℃冰箱,靜置12-24h,確保細(xì)胞完全凍存。
     
    手動(dòng)梯度降溫(無程序降溫盒時(shí)):
     
    凍存管先置于4℃冰箱30min,再轉(zhuǎn)移至-20℃冰箱1h,接著放入-80℃冰箱過夜,步驟不可省略,避免降溫過快損傷細(xì)胞。
     
    步驟5:液氮長期保存
     
    從-80℃冰箱取出凍存管,快速轉(zhuǎn)移至液氮罐的氣相層(溫度-196℃),避免常溫暴露時(shí)間過長(≤1min)。
     
    記錄凍存管在液氮罐中的存放位置,建立凍存臺(tái)賬,方便后續(xù)查找。
     
    三、不同類型細(xì)胞的凍存注意事項(xiàng)
     
    貼壁細(xì)胞:消化時(shí)間需精準(zhǔn)控制,避免過度消化導(dǎo)致細(xì)胞膜損傷;吹打時(shí)動(dòng)作輕柔,減少細(xì)胞機(jī)械損傷。
     
    懸浮細(xì)胞:離心前可適當(dāng)提高離心轉(zhuǎn)速(1000-1200rpm),確保細(xì)胞沉淀完全;凍存時(shí)可適當(dāng)提高細(xì)胞濃度(1×10?個(gè)/mL)。
     
    干細(xì)胞/敏感細(xì)胞:選用無血清凍存液,或在凍存液中添加額外保護(hù)劑(如海藻糖);降溫速率可調(diào)整為-0.5℃/min,進(jìn)一步減少損傷。
     
    原代細(xì)胞:凍存前需確保細(xì)胞純度,避免雜細(xì)胞影響;凍存液中血清比例可提高至80%,增強(qiáng)保護(hù)效果。
     
    四、凍存后質(zhì)量驗(yàn)證(可選)
     
    凍存1-2周后,隨機(jī)取出1-2支凍存管復(fù)蘇,檢測(cè)細(xì)胞活性和生長狀態(tài):
     
    快速37℃水浴解凍,臺(tái)盼藍(lán)染色計(jì)數(shù),活性≥80%為合格。
     
    接種后觀察細(xì)胞貼壁/生長情況,確保細(xì)胞形態(tài)和功能正常,凍存效果達(dá)標(biāo)。
     
    五、常見問題與解決方案
     
    細(xì)胞復(fù)蘇后活性低:
     
    原因:降溫過快、凍存液配比錯(cuò)誤、細(xì)胞狀態(tài)差。
     
    解決:嚴(yán)格遵循梯度降溫,現(xiàn)配凍存液,選擇對(duì)數(shù)生長期細(xì)胞。
     
    凍存管爆炸:
     
    原因:凍存管密封不嚴(yán),液氮滲入,解凍時(shí)受熱膨脹。
     
    解決:擰緊凍存管蓋,解凍前檢查凍存管是否破損,解凍時(shí)開蓋前在超凈工作臺(tái)中靜置1min。
     
    細(xì)胞污染:
     
    原因:操作環(huán)境不無菌、凍存液/器材污染。
     
    解決:超凈工作臺(tái)嚴(yán)格消毒,使用無菌器材,凍存液過濾除菌。
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